辅酶ⅠNAD(H)含量测试盒

试剂一：粉剂 1×1瓶，粉剂 2×1瓶，4℃保存；临用前用少量蒸馏水将粉剂 1和粉剂 2溶解 后倒入容量瓶中，用蒸馏水定容至 100mL，形成 NAD和 NADH提取液（注：试 剂瓶中的粉剂要冲洗干净），4℃保存 3个月； 试剂二：粉剂 1×1瓶，粉剂 2×1瓶，粉剂 3×1瓶，4℃保存；临用前用少量蒸馏水将粉剂 1、粉剂 2和粉剂 3溶解后倒入容量瓶中，用蒸馏水定容至 1000mL，形成流动相缓 冲液基质（注：试剂瓶中的粉剂要冲洗干净）, 4℃保存 3个月。 试剂三：NAD标准品 5mg×1支，-20℃保存。加入 1mL试剂一，配成 5mg/mL溶液，现配 现用，用不完的试剂-20℃保存。 试剂四：NADH标准品 5 mg×1支，-20℃保存。加入 1mL试剂一，配成 5mg/mL溶液，现 配现用，用不完的试剂-20℃保存。
	电子名片

工作原理：
NAD和 NADH在 254 nm下有吸收峰，利用高效液相色谱法在相应波长下测定其含量。
测定意义：
辅酶ⅠNAD(H)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中，NAD是糖酵解和 TCA循环
的主要氢受体，生成的 NADH经呼吸电子链传递把电子交给氧，在合成 ATP的同时，形成
大量的 ROS，同时 NADH再生为 NAD。糖、脂、蛋白质三大代谢物质分解中的氧化反应绝
大部分通过这一体系完成。NAD(H)含量和 NADH/NAD比值的高低可用于评价糖酵解和
TCA循环的强弱。较高的 NAD(H)及 NADH/NAD比值说明细胞呼吸耗氧量较高，处于过氧
化状态，NADH/NAD比值升高也可抑制糖酵解和 TCA循环。另外，NAD降解产物具有非
常重要的调控作用。
标本处理：
称取约 0.1g组织，加入 1mL试剂一，提取 NAD和 NADH，20000 g，4℃
离心 30 min，取上清液用 0.22μm水系针头式过滤器过滤后待测。
细胞处理：收集于 60 mL细胞，离心菌体经高压冷冻干燥 12 h后，加入 2 mL试剂一。
超声破壁细胞(950 W，30%，15 min，工作 1 s，间隔 2 s)，再经 10000 g 4℃离心 40min，上
清用 0.22μm水系微孔滤膜过滤后直接上柱检测。
订购流程：
    1、报价含普票、运费。
    2、常用试剂备货充足，除对温度要求极其严格的产品当天可发货。
    3、进口原装产品要3-6周的货期，详细情况请咨询客服。
    4、订货时间为工作日每周一至周五16:00之前。
    5、如需代为检测，标本对环境温度高，可联系客服安排专人取样（限省内客户）。
    6、代测免收代测费，一周出结果。
    7、产品因运输途中包装破损请拒绝签收，做退回。我们将在24小时之内为您补发损坏产品
    8、如因单位财务制度原因，可申请先发货，报账后付款（此条款仅限医院、学校信誉良好
          客户）。
注意事项：
影响显色反应的主要因素有哪些？
影响显色反应的主要因素有显色剂的用量、溶液的酸度、显色时间以及干扰离子等。
为了使测定结果有较高的灵敏度和准确度，如何选择最适宜的测量条件？
一般从以下几个方面来考虑：
①选择适当的测量波长。一般根据待测组分的吸收光谱选择最大吸收波长作为测量波长。如果干扰组分在最大吸收波长也有吸收,则应根据：吸收大，干扰小”的原则来选择测量波长
②调价溶液的浓度，或选用不同厚度的吸收池，控制被测是呀的吸光度在0.2-0.8范围内。
③选择适当的参比溶液。
在分析复杂样品时，如何消除干扰？
消除干扰方法主要有：
1、加入眼笔记，如加入配位掩蔽剂，使其与干扰离子生成测定波长物吸收的配合物，如加入氧化还原掩蔽剂，改变干扰离子的价态。
2、选择适宜的显色条件，如控制溶液的酸度等，使干扰离子与显色剂不发生反应。3、采用双波长或其他选择性的方法；
4、分离干扰离子。
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原创作者：青岛捷世康生物科技有限公司

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